DANAGENE SALIVA KIT PROTOCOLO RÁPIDO
DANAGENE SALIVA KIT
PROTOCOLO RÁPIDO
Extracción a partir de muestras de 600 microlitros de saliva directa
Componentes kit
Ref.0603.4 Ref.0603.41 Conservación 50 extracciones 160 extracciones
Tampón de Lisis 30 ml 3 x 34,5 ml Tª ambiente Tampón 10 ml 3 x 14 ml Tª ambiente
Precipitación proteínas 3x 37,5 ml Tª ambiente
Tampón de Hidratación 35 ml
SOLUCION MUCULOTICA Y DESCONTAMINANTE PARA ESPUTOS
PURIFICACION
Extracción a partir de muestras de 600 microlitros de saliva directa
Componentes kit
Ref.0603.4 Ref.0603.41 Conservación 50 extracciones 160 extracciones
Tampón de Lisis 30 ml 3 x 34,5 ml Tª ambiente Tampón 10 ml 3 x 14 ml Tª ambiente
Precipitación proteínas 3x 37,5 ml Tª ambiente
Tampón de Hidratación 35 ml
SOLUCION MUCULOTICA Y DESCONTAMINANTE PARA ESPUTOS
N-acetil-L-cisterna (NALC): 0,375 g.
Citrato trisódico .2 H2O: 14,5 g.
Hidróxido sódico (NaOH): 20,0 g.
Agua destilada: hasta 1000 ml
NOTA: Si la Solución de Lisis contiene un precipitado debido a las bajas
temperaturas, incubar a 37ºC y mezclar para disolver el precipitado.
Equipos y reactivos necesarios y no provistos
- Isopropanol.
- Etanol 70%.
- Microtubos de 1,5 o 2 ml
.
- Centrifuga de alta velocidad
.
- Agitador tipo vórtex.
- Micropipeta y puntas.
- Baño de agua.
PRETRATAMIENTO
Toma de muestra
Depositar aproximadamente unos 1,5 ml de saliva en un envase de recogida. Se
recomienda no haber comido nada durante los 30 minutos previos a la toma de
muestra. Para ello pasar la lengua con movimientos arriba-abajo por las paredes de
las mejillas, mandíbulas y paladar para recoger las células.
Lisis Celular
1. Colocar 600-800 micro litros saliva en un microtubo de 1.5 ml. Centrifugar durante
90 segundos a 13.000-16.000 x g. Eliminar el sobrenadante con pipeta sin dañar el
pellet blanco visible de células.
EXTRACCION
2. Añadir 600 micro l. de Tampón de Lisis. Resuspender con la micropipeta mediante
movimientos arriba y abajo, para disolver el pellet de células y lisarlo. MUY
IMPORTANTE, resuspender completamente el pellet sin que se observe ningún
grumo blanco, ya que sino la cantidad de ADN obtenida será pequeña.
3. Incubar durante 10 minutos. Agitar los tubos suavemente cada 2 minutos. Si
es posible incubar a 37ºC, ya que esto mejorará el rendimiento.
PURIFICACION
Precipitación proteica.
1. Añadir 200 micro l. de Tampón de Precipitación proteínas al lisado celular.
2. Mezclar vigorosamente con un agitador tipo vórtex, a máxima velocidad durante
20-30 segundos.
3. Centrifugar a 13.000-16.000 x g durante 5 minutos. Se formará un precipitado.
Si se observan partículas flotando volver a centrifugar después de incubar 5
minutos en hielo
Precipitación del ADN.
1. Traspasar el sobrenadante que contiene el ADN a un microtubo de 1,5 ml que
contenga 600 micro l de Isopropanol.
2. Mezclar por inversión unas 25-50 veces.
3. Centrifugar a 13.000-16.000 x g durante 2 minutos. El ADN será visible como un
pellet blanco.
4. Eliminar el sobrenadante y secar el tubo de forma breve en papel absorbente.
Añadir 600 micro l de Etanol 70% para lavar el ADN.
5. Centrifugar a 13.000-16.000 x g durante 1 minuto. Cuidadosamente eliminar el
sobrenadante sin tocar el pellet de ADN. Volver a centrifugar brevemente y con una
micropipeta y punta fina recoger las últimas gotas el etanol residual.
6. Invertir el microtubo en un papel absorbente y dejar secar durante unos 5-10
minutos.
Hidratación del ADN.
1. Añadir 100-750 micro l. Tampón de Hidratación, dependiendo del tamaño del
pellet de ADN, y resuspender con micropipeta.
Es posible que los pellets de gran
tamaño necesiten una incubación a 55ºC durante 1 hora para poder resuspenderlos
completamente antes de llevar a cabo la PCR. Para pellets muy pequeños se puede
utilizar 25-50 micro l. de Tampón de Hidratación.
2. Conservar a 2-8ºC. Para almacenajes largos conservar a -20ºC o – 80ºC.













Comentarios
Publicar un comentario